Pollen viability and tissue culture initiation of salix lap-ponum, an endangered species in Poland

The main aim of the study was to investigate the viability of pollen of a boreal relict, Salix lapponum, an endangered species in Poland as well as to evaluate the possibility to introduce the plant into a tissue culture. Two approaches were taken to estimate pollen viability: staining pollen with dyes and in vitro germination assay. The study results showed high pollen viability of the species, with regard to both fresh pollen and pollen stored for 12 months. The effectiveness of pollen tube growth was also found to be largely dependent on glucose content in a medium and thermal conditions. The study results have provided necessary information on the most optimal combinations for pollen germination of boreal willow in artificial conditions. The research on tissue culture initiation of S. lapponumwas also undertaken. The most contamination free explants were obtained, when the shoot pieces had been soaked in a solution of fungicides, followed by the dip in 70% alcohol and surface disinfected in 2% NaOCl for 30 minutes. The most good quality shoots were obtained on the MS media supplemented with 0.1 mg·dm-3 BA and 0.01 mg·dm-3 IBA.

W pracy przedstawiono badania dotyczące zagrożonego w Polsce gatunku reliktowego wierzby lapońskiej (Salix lapponum). Głównym celem badań było określenie żywotności pyłku badanego gatunku w warunkach sztucznych oraz zweryfikowanie możliwości inicjacji kultur tkankowych. Żywotność pyłku S. lapponum szacowano na dwa sposoby, metodą barwienia oraz kiełkowania ziaren pyłku w łagiewkę. Na podstawie uzyskanych wyników badań wnioskuje się wysoką żywotność pyłku, zarówno świeżego jak i przechowywanego przez 12 miesięcy. Kiełkowanie ziaren pyłku uzależnione było od stężenia glukozy w pożywce i temperatury. Wyniki badań dostarczyły informacji na temat optymalnych warunków kiełkowania ziaren pyłku wierzby lapońskiej w warunkach laboratoryjnych. Podjęto również badania nad wprowadzeniem S. lapponum do kultur tkankowych. Najwięcej eksplantatów bez objawów zakażenia uzyskano, gdy fragmenty pędów moczone były w mieszaninie fungicydów, zanurzane w 70% roztworze alkoholu i odkażane powierzchniowo 2% NaOCl przez 30 min. Najwięcej dobrej jakości pędów uzyskano na pożywce MS, uzupełnionej 0,1 mg·dm-3 BA i 0,01 mg·dm-3 IBA